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    食品中的汞

    食品中痕量级金属和其它元素

    双硫腙比色法
        
    A 原理
        样品用HNO3及H2SO4于特殊仪器中回流消化,用双硫腙萃取液分离Hg,Cu被除去,而Hg的双硫腙配合物则可以用比色法测定。
    B 注意事项
        关键步骤是样品的消化。消化必须完全,否则残余的有机物可能会与Hg结合而阻止或防碍双硫腙的萃取。消化液中的氧化性物质必须破坏掉,以免双硫腙试剂被氧化分解,使得Hg不能被定量萃取。另外,由于Hg化合物的挥发性,制备样品过程要小心加热消化。萃取前样品液的酸度〔用NH4OH部分中和后〕应大致为1N而不应大于1.2N。活塞上不要使用硅氧烷润滑剂。
    C 仪器
        〔因Hg化合物容易吸附于玻璃器皿上,仪器、特别是分液漏斗要经过稀HNO3洗涤,再用H2O冲洗。〕
    C.1 特殊消化仪
        见图14-5。仪器用Pyrex玻璃制成,全部采用标准接口。A是改装的索氏提取器,外径5cm,溢流孔以下容积200ml。没有内部虹吸管,但在通向消化瓶D的管中装以活塞。活塞打开时,仪器处于回流状态;活塞关闭,A则作为冷凝H2O及酸的收集阱。A的顶部与35cm长的Friedrichs冷凝管相接,底部与500具24/40标准接口的二颈圆底烧瓶D的中央颈管相接,圆底烧瓶两颈管间距3cm,以给出空隙。第二颈管与75ml的滴液漏斗B相接。
    D 试剂
        
    D.a 汞标准溶液
        
    D.a.1 贮备液
        1mg/ml。用干燥的重结晶HgCl2配制(67.7mg/50ml)。
    D.a.2 工作液
        2μg/ml浓度比较合适。用贮备液稀释而成并贮存于Pyrex玻璃瓶内。所有标准溶液在稀释定容前均按8ml/L的比例加入HCl。
    D.b 氯仿
        
    D.c 双硫腙溶液
        
    D.d 硫代硫酸钠溶液
        1.5%。当天配制。
    D.e 次氯酸钠溶液
        最好是有效Cl含量为5%的试剂。市售试剂有效Cl含量不等,配制时应加以注意。不用时贮存于冰箱中,且需每月测定其滴定度。〔某些家用次氯酸盐试剂含有痕量的Hg,若使用这些制剂,需检查其空白值,含Hg大于0.1μg/ml的不能用。〕
    D.f 稀乙酸
        30%体积比浓度。
    D.g 盐酸羟胺溶液
        20%(w/v)。用稀双硫腙萃取至CHCl3层保持绿色,用CHCl3除去过量的双硫腙,过滤。
    E 样品的制备
        〔酸消化于通风橱内进行〕$$测定用的湿样应相当于小于等于10g的干样。
    E.a 新鲜水果或蔬菜及饮料
        称取适量样品于消化瓶内,加入6颗玻璃球,组装好仪器,从滴液漏斗加入20ml HNO3,让冷凝管中的冷凝水快速通过,索氏提取器的活塞置于回流状态,通过一开孔的石棉板〔孔径2-5cm〕,用小火给烧瓶加热〔开始时不能让反应过于剧烈,否则产生的大量NO2烟雾会通过冷凝管携带走消化液蒸汽,使Hg损失〕,待初始的反应完成后,加热使消化液好呈回流状态。若混合物颜色变黑,据需要从漏斗滴加HNO3,继续回流0.5h或至消化液稠度不再改变,冷却。$$慢慢加入20ml冷HNO3-H2SO4混合物(1+1),〔样品干重小于等于5g,则只需加10ml〕小火加热,必要时可不断地滴加少许HNO3,以消除消化液中的黑色物。继续加热至纤维性物质〔果皮,纤维素等〕明显被消化,关闭索氏提取器的活塞至冷凝收集H2O和酸的位置,加热至溶液变深棕色后再继续加HNO3。〔脂肪与腊在回流状态不能被热酸完全消化,因此不必尝试在此步就将消化完全。〕待脂肪与腊以外的其它物质均已溶解后,冷却,小心地把水与酸排放到烧瓶的消化液主体中,冷却,从冷凝管及仪器中间部分加入两份25ml的H2O。取下反应烧瓶,放入冷水中冷却或于瓶子周围放些冰,以使脂肪与腊毛固化。用小块玻璃毛过滤除去不溶性物质,然后用2份10ml H2O依次淋洗反应瓶及过滤用的玻璃毛填塞。取下索氏提取器,用热水洗涤提取器和烧瓶,以除去不溶性物质。从冷凝管加入热H2O,洗去挥发的脂肪和油。弃去上述全部洗涤液。$$将盛样品滤液的烧瓶与仪器其它部件连接好,加热,并收集H2O及酸于收集阱内。必要时加入少量HNO3使消化完全。在消化后期,调节火焰大小,使得消化液刚好沸腾〔微沸〕,而酸蒸汽又不至冒过冷凝管的下半部分。加入最后一份HNO3后再继续加热15min,此时消化液应呈无色或浅黄色。冷却,将阱内液体小心排放到反应烧瓶内,从冷凝管加入两份50ml H2O,加热使溶液回流,直至全部NO2从仪器内排尽。加入5ml 40% w/v尿素溶液,回流15min〔消化液至此应呈无色或浅黄色〕。
    E.b 干果,谷类食品、种子和谷物
        称取适量样品于消化瓶内,加入6颗玻璃球,组装好仪器,从滴液漏斗加入20ml HNO3,让冷凝管中的冷凝水快速通过,索氏提取器的活塞置于回流状态,通过一开孔的石棉板〔孔径2-5cm〕,用小火给烧瓶加热〔开始时不能让反应过于剧烈,否则产生的大量NO2烟雾会通过冷凝管携带走消化液蒸汽,使Hg损失〕,待初始的反应完成后,加热使消化液好呈回流状态。若混合物颜色变黑,据需要从漏斗滴加HNO3,继续回流0.5h或至消化液稠度不再改变,冷却。$$慢慢加入20ml冷HNO3-H2SO4混合物(1+1),〔样品干重小于等于5g,则只需加10ml〕小火加热,必要时可不断地滴加少许HNO3,以消除消化液中的黑色物。继续加热至纤维性物质〔果皮,纤维素等〕明显被消化,关闭索氏提取器的活塞至冷凝收集H2O和酸的位置,加热至溶液变深棕色后再继续加HNO3。〔脂肪与腊在回流状态不能被热酸完全消化,因此不必尝试在此步就将消化完全。〕待脂肪与腊以外的其它物质均已溶解后,冷却,小心地把水与酸排放到烧瓶的消化液主体中,冷却,从冷凝管及仪器中间部分加入两份25ml的H2O。取下反应烧瓶,放入冷水中冷却或于瓶子周围放些冰,以使脂肪与腊毛固化。用小块玻璃毛过滤除去不溶性物质,然后用2份10ml H2O依次淋洗反应瓶及过滤用的玻璃毛填塞。取下索氏提取器,用热水洗涤提取器和烧瓶,以除去不溶性物质。从冷凝管加入热H2O,洗去挥发的脂肪和油。弃去上述全部洗涤液。$$将盛样品滤液的烧瓶与仪器其它部件连接好,加热,并收集H2O及酸于收集阱内。必要时加入少量HNO3使消化完全。在消化后期,调节火焰大小,使得消化液刚好沸腾〔微沸〕,而酸蒸汽又不至冒过冷凝管的下半部分。加入最后一份HNO3后再继续加热15min,此时消化液应呈无色或浅黄色。冷却,将阱内液体小心排放到反应烧瓶内,从冷凝管加入两份50ml H2O,加热使溶液回流,直至全部NO2从仪器内排尽。加入5ml 40% w/v尿素溶液,回流15min〔消化液至此应呈无色或浅黄色〕。
    E.c 肉类,鱼类及生物材料
        称取适量样品于消化瓶内,加入6颗玻璃球,组装好仪器,从滴液漏斗加入20ml HNO3,让冷凝管中的冷凝水快速通过,索氏提取器的活塞置于回流状态,通过一开孔的石棉板〔孔径2-5cm〕,用小火给烧瓶加热〔开始时不能让反应过于剧烈,否则产生的大量NO2烟雾会通过冷凝管携带走消化液蒸汽,使Hg损失〕,待初始的反应完成后,加热使消化液好呈回流状态。若混合物颜色变黑,据需要从漏斗滴加HNO3,继续回流0.5h或至消化液稠度不再改变,冷却。$$慢慢加入20ml冷HNO3-H2SO4混合物(1+1),〔样品干重小于等于5g,则只需加10ml〕小火加热,必要时可不断地滴加少许HNO3,以消除消化液中的黑色物。继续加热至纤维性物质〔果皮,纤维素等〕明显被消化,关闭索氏提取器的活塞至冷凝收集H2O和酸的位置,加热至溶液变深棕色后再继续加HNO3。〔脂肪与腊在回流状态不能被热酸完全消化,因此不必尝试在此步就将消化完全。〕待脂肪与腊以外的其它物质均已溶解后,冷却,小心地把水与酸排放到烧瓶的消化液主体中,冷却,从冷凝管及仪器中间部分加入两份25ml的H2O。取下反应烧瓶,放入冷水中冷却或于瓶子周围放些冰,以使脂肪与腊毛固化。用小块玻璃毛过滤除去不溶性物质,然后用2份10ml H2O依次淋洗反应瓶及过滤用的玻璃毛填塞。取下索氏提取器,用热水洗涤提取器和烧瓶,以除去不溶性物质。从冷凝管加入热H2O,洗去挥发的脂肪和油。弃去上述全部洗涤液。$$将盛样品滤液的烧瓶与仪器其它部件连接好,加热,并收集H2O及酸于收集阱内。必要时加入少量HNO3使消化完全。在消化后期,调节火焰大小,使得消化液刚好沸腾〔微沸〕,而酸蒸汽又不至冒过冷凝管的下半部分。加入最后一份HNO3后再继续加热15min,此时消化液应呈无色或浅黄色。冷却,将阱内液体小心排放到反应烧瓶内,从冷凝管加入两份50ml H2O,加热使溶液回流,直至全部NO2从仪器内排尽。加入5ml 40% w/v尿素溶液,回流15min〔消化液至此应呈无色或浅黄色〕。
    F 汞的分离
        〔酸消化于通风橱内进行〕$$测定用的湿样应相当于小于等于10g的干样。
    G 测定
        使用1cm比色皿时,下表对制作标准工作曲线与估计样品液中Hg的含量范围很有用:$$ $T Hg范围,μg@双硫腙浓度,mg/L@双硫腙体积,ml$$0-10@ 6@5$$0-50@10@25$$0-100@10@40$T根据所需范围制作工作曲线。取点可以从空白起到此范围的最高限,中间包括4个浓度点。取一系列分液漏斗,各加入50ml 0.1N HCl,适量的汞,5ml NH2OH·HCl及5ml CHCl3。剧烈振摇1min,分层后将CHCl3层放出并弃去。这里应尽可能仔细地将所有的有机液滴都排放干净。加入3ml 30%HOAc及适量双硫腙溶液,剧烈振摇1min,让其分层。〔HOAc有助于双硫腙汞盐的稳定〕把一小团棉花插入分液漏斗颈内,将双硫腙萃取物过滤并收集到试管中〔弃去最前面放出的10ml〕,加入适当 的吸收池,于比色计上测定490nm波长的吸收A。〔由于稀的双硫腙溶液与双硫腙汞盐都不太稳定,测定需马上进行。〕以A对μg Hg作图得标准曲线。
    H 标准曲线的制作
        使用1cm比色皿时,下表对制作标准工作曲线与估计样品液中Hg的含量范围很有用:$$ $T Hg范围,μg@双硫腙浓度,mg/L@双硫腙体积,ml$$0-10@ 6@5$$0-50@10@25$$0-100@10@40$T根据所需范围制作工作曲线。取点可以从空白起到此范围的最高限,中间包括4个浓度点。取一系列分液漏斗,各加入50ml 0.1N HCl,适量的汞,5ml NH2OH·HCl及5ml CHCl3。剧烈振摇1min,分层后将CHCl3层放出并弃去。这里应尽可能仔细地将所有的有机液滴都排放干净。加入3ml 30%HOAc及适量双硫腙溶液,剧烈振摇1min,让其分层。〔HOAc有助于双硫腙汞盐的稳定〕把一小团棉花插入分液漏斗颈内,将双硫腙萃取物过滤并收集到试管中〔弃去最前面放出的10ml〕,加入适当 的吸收池,于比色计上测定490nm波长的吸收A。〔由于稀的双硫腙溶液与双硫腙汞盐都不太稳定,测定需马上进行。〕以A对μg Hg作图得标准曲线。
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